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 來源:實(shí)驗動物那些事兒 日期:2023.01.03 

實驗動物非常規眼科檢查簡介

如前文(wén)《實(shí)驗(yàn)動物的常規眼科檢查》一文中所寫(xiě),眼科檢查的(de)操作流程可因(yīn)動物種屬和特點的研究目的而(ér)異。如果目的是篩查藥物等物(wù)質對眼部組織的(de)不良影響,則(zé)應至少進行間接檢眼鏡和裂隙燈顯微鏡的檢查。根據檢查目的,也可執行其它程(chéng)序,比如角膜染色、角(jiǎo)膜知覺檢查、角膜厚度測量、眼壓(yā)計、眼底照相(xiàng)、熒光血管造影、光學相幹斷層掃(sǎo)描 (OCT, Optical Coherence Tomography) 和視覺係統的電生理評估(例如視網膜電(diàn)圖、多焦視網(wǎng)膜電圖(tú)、視覺誘發電位)。

許多無創(chuàng)性(xìng)眼科診斷(duàn)技術,可同時提(tí)供眼前節與眼後(hòu)節的結構和功能信息。下麵討論了其中一些(xiē)技術,對這些技術適用於毒理學(xué)、眼科研究和臨床應用的場景進行了初步討論。

01、眼壓測量

眼壓計用於(yú)獲得眼內壓 (IOP, Intraocular Pressure) 的間接測量值。市麵上有幾種不同的(de)商品化的手持式設備,其(qí)便攜性足(zú)以供眼科檢查人員使用,如壓陷、壓(yā)平(píng)或回彈式眼壓計(jì)。對於合同(tóng)研發組織(CROs, Contract research organizations)使用(yòng)的多種(zhǒng)動物(wù)種屬,通常認為(wéi)Schiotz壓陷式眼壓計的結(jié)果不準確、不可靠,因此不應用於眼部毒理學(xué)研究。由於許多眼壓計最(zuì)初設計用於人的角膜,用於動物的讀(dú)數可能略不準確,但如果在整個研究期間由同一名檢查者使用相同的眼(yǎn)壓計(jì),則研(yán)究中發生的(de)眼壓變(biàn)化(huà)將是有效的。

大多數實驗動物的 IOP 範圍為 12-25 mmHg,雙眼之間的差異應≤5 mmHg。IOP 可受到多個變量的影響,如:保定技術、動物應激、晝夜節律眼位(wèi)、鎮靜或麻醉、角膜厚度等。如果(guǒ)可能,在進行眼壓(yā)測量時,應在整個研究期間保持(chí)如下細節的統一:每天相同的測量時間、相同的眼壓計和操作技術、同一組檢查人員和保定人員,來測量試驗內所(suǒ)有動物(wù)的 IOP。應在散瞳之前測定眼壓。當眼壓測量是研究的關鍵點時,建(jiàn)議(yì)研(yán)究開始(shǐ)前先對動物(wù)進行保定(dìng)適應和操作適應。

最常使用的是壓平式眼壓(yā)計,如Tono-Pen XL®、Tono-Pen Vet®、Tono-Pen AVIA® ,或非接(jiē)觸式眼壓計。眼壓測量需表麵麻醉時,0.5% 丙(bǐng)美卡因(yīn)是最常見的選(xuǎn)擇。該技術測(cè)量壓平角膜給定區(qū)域所需的力,然後將(jiāng)該施加力轉換(huàn)為眼壓值(zhí)(單位:mmHg)。一些壓平式眼壓(yā)計具有自我校準(zhǔn)的優勢(圖1),而非接觸式眼壓計可提供紙質(zhì)副本用於記錄保存,兩者都是(shì)藥物非(fēi)臨床研(yán)究質(zhì)量管理規範(GLP,Good Laboratory Practice)類研究的理想(xiǎng)技術。Tono-Pen XL 和 Tono-Pen Vet® 產生4個獨立讀數,可對讀數取平均值,並顯示IOP和誤差百分比,即單個讀數之間變異性。Tono-Pen AVIA® 產生10 個獨立讀數(shù),並(bìng)以置信度百分比報告 IOP 和(hé)變異性(xìng)。對於 Tono-Pen XL®,誤差百分(fèn)比應 <5%,而對於 Tono-Pen AVIA®,置信度百分比應 >95%。

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圖1  Tono-Pen AVIA Vet® 用於(yú)測量Dutch Belted Rabbit的眼壓

回彈(dàn)式眼壓(yā)計通過向角膜發射一個小的塑料(liào)探針(zhēn)頭(tóu)來確定眼壓,然後探頭反彈回(huí)設備中(zhōng),產生感應電流(liú),由此計算眼壓(yā)值。為了準確測量,探針必須以水平(píng)位置在角膜上擊(jī)發,即探針與地板平行(háng)。實驗動物最常用的(de)回彈眼壓計是 Tonovet®(圖2a)。Tonovet® 專門針對(duì)犬、貓和馬進行了校準,但也已在其它種屬中可靠地使用。TonoLab 眼壓(yā)計是專門為小鼠和大鼠設計和校(xiào)準(zhǔn)的(圖2b)。在許多實驗動物中,包(bāo)括犬、兔和大鼠(shǔ),Tonovet 和 TonoLab 眼壓計具有不需要局部麻醉(zuì)的優點(diǎn),並(bìng)且比 Tono-Pen® 更容易獲得 IOP,其缺點是(shì)在使用前(qián)不(bú)能自行校準。與 Tono-Pen® 和 Tonovet® 一樣,它也取6 個讀數的平均值,並(bìng)使(shǐ)用眼壓值的(de)左側欄指示誤差百分比。測量時,應沒有錯誤(wù)欄,或(huò)者欄應該位於屏幕的左下角,以使讀數可以接受。

無論使用何種(zhǒng)眼壓計,通常每隻眼應(yīng)獲得(dé)並記錄至少 2-3 個最(zuì)終平均讀數。由於除(chú)非(fēi)接觸式外的所有(yǒu)眼壓計僅給出數字讀數,設備不(bú)會創建永久性(xìng)記錄,因(yīn)此必須手(shǒu)動記錄 IOP 或將其輸入計算機(jī)數據庫中。

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圖2  (a) The Tonovet® 回彈式眼壓計測量New Zealand white rabbit眼壓  (b) TonoLab 眼壓計小小的尖端(duān)可用於齧齒類的眼壓測定

02、角膜厚度測量(liàng)法

角膜厚度測量法是一種無創性(xìng)評價(jià)角膜厚度的方法。 最常(cháng)使(shǐ)用專門為此目的設計的接觸式超(chāo)聲設備(例如 PachPen®)進行(圖3),但也可以通過(guò)高分辨率超聲檢查或光學(xué)相幹斷層掃描(OCT, Optical Coherence Tomography)獲得角膜厚度的測量結果。在角(jiǎo)膜水(shuǐ)腫可被生物顯微鏡檢測(cè)出之前,角膜厚度(dù)測量法可對角膜厚度的細(xì)微(wēi)變化進行評價(jià)。角膜厚度可因(yīn)種屬的(de)不(bú)同,以及角膜區域不同(軸向(xiàng)或(huò)周(zhōu)邊)而變化。由於(yú)區(qū)域差異,必(bì)須在每(měi)個(gè)時間點從角膜(mó)的相同區域進行測量,通常選用軸向。

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圖3  PachPen 測量New Zealand white rabbit角膜厚度(dù)

03、熒光素染色法

在涉及眼(yǎn)局部給藥、角膜(mó)接觸鏡評價的(de)研究,和使用改(gǎi)良 Hackett-McDonald 評分係(xì)統的其他研究中,通常使用熒光素鈉溶液評價角膜上(shàng)皮(pí)的完整性。熒光(guāng)素是一種水溶性熒光染料,可被親水性角膜基質保留,但不被(bèi)角膜上皮保留(liú)。它可用(yòng)於輔助識別角膜上皮缺損,也可用(yòng)於評價角膜前的(de)淚膜滯留。熒光素以單個浸漬(zì)條(tiáo)帶的形式(shì)提供,使用時使用無菌生(shēng)理鹽(yán)水潤濕。將濕潤的條帶輕輕塗抹在背側球結膜上,注意不要接(jiē)觸角膜。然後使用鹽水輕輕衝洗多餘的熒光素。或者,可將熒光素條置於塑料注射器中,並加(jiā)入預(yù)定體積的無(wú)菌生理鹽水,以(yǐ)產生已知熒光素濃度的(de)溶液,然後滴在角膜上。由眼科檢(jiǎn)查人(rén)員(yuán)使用(yòng)帶有鈷藍濾光片的生物顯微鏡對角膜進行(háng)檢查(chá),觀察(chá)是否有殘留的熒光。

04、眼部照相

眼部照相可用來證明眼底(dǐ)等區域(yù)無變化,或記錄異常以及監測(cè)病變的進(jìn)展。可在研究期間的不同時間點拍攝照片來進行比較,以準確(què)地確定異常是靜態的還是進行性(xìng)的。由於照(zhào)相增加了額外的時間、成本和動物應激,因(yīn)此並非所有研究均(jun1)需進行。在觀察到病變時,或很可能引起眼部異常的研究中(例如眼內植入物,玻璃體內或視網膜下注射研究),可在研究方案中將(jiāng)其作為一種記錄(lù)病變的選(xuǎn)擇。

眼部照相可分為(wéi)眼外部和眼內部。眼外(wài)部的拍攝可使用帶有微距透鏡的標準單鏡頭反光(SLR, Single Lens Reflex)數碼相機,或(huò)帶屈光度設置調(diào)節以(yǐ)允許眼外部和眼前節成像的數字 Kowa Genesis-D 眼底照相機。眼(yǎn)後節的拍攝需要特定類型的眼(yǎn)底照相機,數字化Kowa Genesis-D 照相機、RetCam、Phoenix Micron IV 和 Micron X 適用於大多數實驗動物的拍攝(shè)(圖4)。這些照相機可適(shì)用於間接(jiē)眼部照相、齧齒類動物眼底照相和熒光血管造影。眼(yǎn)底照相的優點是能夠永久保存(cún)記錄,以比較潛在的研究相關結果,如果有發現,則可由另(lìng)一(yī)名眼科檢查再次進行獨立審閱。

在拍攝(shè)照片時,所有照片都應使用相(xiàng)同的(de)放大倍率和照明設置。此外,所(suǒ)有動物均應按相同(tóng)眼別順序(左和右)進(jìn)行拍攝,同時應保存動物標識和設備日(rì)誌等拍攝記錄。上述標準也(yě)可作為標準操作規程 (SOP, Standard Operating Procedures) 的一部分。

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圖4  可用於實驗動(dòng)物的(de)眼底相機

05、熒光血管造影

熒光血管造影可用於評價眼(yǎn)內動脈和靜脈的血管完整性。雖然其最常用於檢查視網膜和脈絡膜的血管,但也可用於檢查虹膜(mó)血管。在(zài)毒理學研究中最常用於評價供試品對(duì)於新生血管形成的影響。目前,它已被(bèi)應用於(yú)多種實(shí)驗動物,最常選用的是10%熒光(guāng)素鈉,也有部分研究選擇吲哚菁綠。

熒光血管造影技(jì)術需要散瞳,並進行(háng)鎮靜或麻(má)醉(zuì)。將(jiāng)光可激發的化合物熒光素靜(jìng)脈注射,可獲得目標組織(脈絡(luò)膜視網膜和虹膜)的一係列定時圖像(xiàng)。與熒光素注射相關的並(bìng)發(fā)症可能包括滲漏後組織刺激、嘔吐和過(guò)敏反應。必須在(zài)能夠拍攝多(duō)幅、快速排序圖像的眼底照相機上使用激發濾(lǜ)光片 (490 nm) 和屏障濾光(guāng)片 (520-520 nm)。Kowa Genesis-Df、RetCam Shuttle、Phoenix Micron X 和 Heidelberg Spectralis cSLO 可用於(yú)熒光血管造(zào)影,且(qiě)是便攜(xié)式的(圖4)。在注射熒光素前,先拍攝對照的彩色圖(tú)像,然(rán)後每 20s 拍攝一組,獲(huò)得連續圖像。由於熒光素填充脈絡膜視網膜血管,因(yīn)此描述了血管流動的各個階段。它們包括動脈前期、動脈期、動靜脈期、靜脈期及後期。熒光血管造影觀察到的異常可能包括血管異常(動脈瘤(liú)、新生血管形成(chéng))、熒光受阻、熒光素滲漏、低熒光和高熒光。

06、視網(wǎng)膜電圖/視覺誘(yòu)發電(diàn)位(wèi)

根據毒理學研究目的,以及可能受影響的視覺係統的(de)特定方麵,有多種電生(shēng)理(lǐ)學試驗可用於評價視網膜和視覺通路。視網膜電圖 (ERG, Electroretinography) 是測量視網膜在(zài)受到光刺激時產生的電勢。標準 ERG 是一種全視野刺激,可(kě)提供關於整個視網膜的信息,是視網膜色素上皮、光感受器和(hé)內層視網膜的群體反應。對於局部視網膜評價(jià)可選用多(duō)焦視網膜電圖 (mfERG, multifocal electroretinogram)。對(duì)於黃斑區(qū)神經節細胞的評價(jià)可選用圖形倒轉視網膜電圖(tú) (PERG, pattern reversal electroretinogram)。而為(wéi)了評價從視網膜(mó)到視覺(jiào)皮(pí)層的整個視(shì)覺通路,視覺誘發電位 (VEP, visual evoked potential) 則是首選技術。在這些試驗中,全視野 ERG最常用於臨床前毒(dú)理學試驗。ERG 提供了(le)一種非(fēi)侵入性的可重複評估視網膜功能的方法,它可結合間接檢眼鏡和組(zǔ)織(zhī)病理學來對視網膜結構和功能進行綜合評估。

ERG應(yīng)在散(sàn)瞳後按標準流程(chéng)進行,目前人(rén)和犬的(de)ERG有許(xǔ)多可參考的國際指南,可作(zuò)為試驗設計的參考。在獲得全視野(yě)ERG過程中,如下條件建議保持(chí)一致:房間照明情況、暗適應(yīng)、閃光強度、頻率以及使用的鎮靜或麻醉劑劑量。

07、光學相幹斷層掃描

光學相幹斷(duàn)層掃描是(shì)一種高分辨率的(de)無創成像技術,可提供眼部結構的實時橫斷麵圖像(xiàng),最常用於視網膜和視神經,其軸向分辨率為 2-10 μm,也可用於眼前節的成像。與許多先進的成像技術一樣,它需要鎮靜或麻醉、散瞳和專門的設備。當進行 OCT 成像時(shí),可看到所有的單個視網膜層,並測量其厚度,以便隨(suí)時間進行定量(liàng)和多次重複評價。其可測量(liàng)視盤的杯麵積、盤麵積、杯直徑、盤直徑以(yǐ)及(jí)邊緣麵積。通過 OCT 對前(qián)節進行檢查則可了解角膜、前房、虹膜和虹膜角膜角的(de)結構信息,且其無需像(xiàng)超聲生物(wù)顯微鏡 (UBM, ultrasound biomicroscopy) 所需的那樣接觸角膜。它還提供了比 UBM更高的(de)軸向分辨率(lǜ)。OCT 在實驗(yàn)動(dòng)物(wù)中(zhōng)已應用於多個種(zhǒng)屬,其在人類疾病動物模型和臨床前試驗中的應用也將越來越多。

隨著技術的進步,頻域 OCT (SD-OCT, spectral-domain OCT) 使用非機械技術,比傳統 OCT 或時域 OCT (TD-OCT, time-domain OCT) 明顯(xiǎn)更快。SD-OCT 同時測量一個光譜中多個波長的反射光,因此被稱為光譜域。SD-OCT 比 TD-OCT 快 100 倍,每(měi)秒可采集 70,000 + 次 A-scan,其掃描速度和(hé)次數的增(zēng)加可(kě)轉化為更高分辨率。

08、角(jiǎo)膜內皮顯微鏡檢(jiǎn)查(chá)

角膜內皮顯微鏡可對角膜內皮細胞進行活體非侵入性的成像(xiàng)觀察,可采用接觸或非接觸方法進行(háng)。一旦可視化,可(kě)評價角膜內皮細胞的細胞形態,並可定量為每 mm 的細胞數量 。正常角膜內皮細胞排列規則,呈六角形。內皮顯微鏡可評價細胞的密度、多形性(xìng)和變異情況。由於細胞數量可因動物年齡和角(jiǎo)膜區域的不同而變化,因(yīn)此須使用相同年(nián)齡的動物(wù)對這些變量(liàng)進行(háng)標準化,並檢查軸向角(jiǎo)膜。須對動物進行鎮靜或麻醉,以獲得準(zhǔn)確的圖像,並可適用於簡化技術的自(zì)動化係統。FDA 已經設(shè)立了關於臨床試驗中角膜(mó)內皮顯微鏡檢查的指南,這些指南可(kě)以作為臨床前研究設計的起點(diǎn)。除角膜內皮顯微鏡外,還可選用體內高分辨率共聚焦顯微(wēi)鏡 (Heidelberg Retina Tomograph with Rostock Corneal Module) 進行角(jiǎo)膜內皮成像和分析(圖5)。

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圖5  Heidelberg Retina Tomograph (with Rostock Corneal Module)用於角膜內皮的(de)成像和(hé)分析

小結

在本篇文章中(zhōng),我們總結了在醫藥行業等研(yán)究(jiū)場景中的非常規眼科檢查的適當方法和技術。這些技術將在(zài)眼部毒理學領域中越來越普遍,技術人員可在研究過程中根據試驗的設計和已發現的(de)眼科(kē)學變化等關鍵因素,來選用進一步的(de)檢查辦法(fǎ)。

參(cān)考文獻

[1] Gilger B C, Cook C S, Brown M H. Standards for Ocular Toxicology and Inflammation [M].  2018.

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